Postsynthetische photochemische Verarbeitung (Level-Two-Musterung). Hohe Komplexitätsmuster können nach der photolithographischen Synthese überlagert werden, z.B. durch Hybridisierung und selektive Vernetzung. eine Nukleinsäure-Vernetzungs-Steganographie. Alternativ zu Oligonukleotiden, die alle Farben kodieren, trennt die farblich anDing mit Bayer-Filtermuster jeden Kanal in unabhängige Pixel. Zwei Kanäle (R & B) werden mit einer Schmelztemperatur-Grauskala kodiert und der grüne Kanal wird mit einer einzigen Sequenz, gefolgt von einem Lichtgradienten, codiert, um eine Grauskala durch variable Vernetzungseffizienz aufzuzwingen. b Das Bild der “versteckten Figur” von drei Wiener Physikern (200 m Skalenbalken) wird mit einem grünen Filter oder durch Abwaschen der nicht vernetzten roten und blauen Kanäle (Ergänzende Abbildung 7) aufgedeckt. c 365 nm UV-Lichteinstrahlunggradienten für CNVK-modifizierte Oligonukleotide (dunkelrot), freies Psoralen (orange), Psoralen-modifizierte DNA-Oligonukleotide (hellgrün) oder Psoralen-modifizierte 2-OMeRNA-Oligonukleotide (dunkelgrün). d Die Vernetzungseffizienz für gebundene und CNVK-modifizierte Oligonukleotide kann mit mehreren Hybridisierungs-/Expositionszyklen erheblich erhöht werden; Prozentwerte sind relativ zur ersten Hybridisierung. Fehlerbalken entsprechen der Standardabweichung. Quelldaten werden als Quelldatendatei bereitgestellt Acht Tauben (Columba livia) nahmen teil. Alle Vögel waren sozial in Freiluftvolieren in Wien untergebracht. Das Experiment wurde in Übereinstimmung mit den österreichischen Tierschutzgesetzen durchgeführt; siehe Huber [64] für Tierhaltungs- und Pflegeverfahren.

Die Vögel wurden 5 Tage die Woche trainiert und hatten freien Zugang zu Wasser und Körnung in ihren Volieren. An Den Tagen, an denen Experimente durchgeführt wurden, war das Essen nur während oder unmittelbar nach den Experimentellen verfügbar. Postsynthetische enzymatische Verarbeitung (Level-Three-Muster). Nukleinsäuresequenzen können selektiv oder programmierbar auf dem Biochip gekeltert, verdaut oder enzymatisch transkribiert werden. eine RNase A ist ein schnelles und effizientes Dekolletémittel und erfordert nur eine einzige RNA-Nukleotid-Inkorporation, optimalerweise ein Pyrimidin, das von Purinen umgeben ist. b In ähnlicher Weise spaltet Uracil-DNA Glycosylase (UDG) an vordefinierten dU-Positionen, ist aber deutlich weniger effizient als RNase-A-Spaltung. c Unmodifizierte DNA kann durch DNase I oder Lambda exonuklease verdaut werden. Bei verzweigten oder vernetzten Nukleinsäurestrukturen verdaut Lambda-Exonuklease nur von einer 5-Zoll-Endstation und führt nicht an der Kreuzung vorbei, so dass der 3-Zoll-Terminal-DNA-Zweig intakt bleibt. DNase kann verwendet werden, wenn der zweite Zweig nicht DNA ist und einen DNA-Oberflächenlinker nicht signifikant verdauen wird, der kürzer ist als ein paar Nukleotide.